BfR: Nationales Referenzlabor für Campylobacter

Nationales Referenzlabor für Campylobacter

Das Reservoir für Campylobacter-Bakterien bilden warmblütige Wild-, Nutz- und Heimtiere (Vögel und Säugetiere), ohne dass diese klinische Symptome einer Erkrankung zeigen. Beim Menschen sind die durch Campylobacter verursachten Infektionskrankheiten vor allem mit Durchfall verbunden. In der Bundesrepublik Deutschland, wie in anderen europäischen Ländern auch, ist Campylobacter der häufigste Erreger von bakteriellen Darminfektionen (Enteritis). In Deutschland werden jährlich ca. 70.000 Erkrankungsfälle durch Campylobacter an das RKI gemeldet.

Campylobacter-Infektionen des Menschen sind meistens lebensmittelassoziiert. Eine der Hauptinfektionsquellen sind unzureichend erhitztes oder kontaminiertes Geflügelfleisch und das Zubereiten von rohem Hühnerfleisch mit Übertragung der Keime auf fertig zu verzehrende Lebensmittel, wie z. B. Salat (s. Video „Dem Keim auf der Spur“ unten auf dieser Homepage). Weitere Infektionsquellen können nicht pasteurisierte Milch, rohes Hackfleisch, nicht aufbereitetes Trinkwasser, die Aufnahme von Oberflächenwasser und Haustiere sein.

Das Nationale Referenzlabor für Campylobacter ist am BfR angesiedelt. Im Vordergrund der Arbeiten stehen Routine- und Forschungsarbeiten zur Charakterisierung und Differenzierung von Campylobacter-Isolaten, die von Tieren, Lebensmitteln und Umweltproben stammen. Für epidemiologische Untersuchungen stehen verschiedene molekularbiologische Methoden, einschließlich der Ganzgenomsequenzierung zur Verfügung.

Arbeitsschwerpunkte des NRL für Campylobacter

Das Nationale Referenzlabor für Campylobacter am BfR hat folgende Arbeitsschwerpunkte:

Wahrnehmung der Aufgaben im Rahmen der Zoonosen-Überwachungsrichtlinie 2003/99/EG
Mikro- und molekularbiologische Diagnostik von Campylobacter spp. und Arcobacter spp.
Ausrichtung von Laborvergleichsuntersuchungen zur qualitativen und quantitativen Detektion von Campylobacter in relevanten Matrizes, wie z. B. Hühnerfleisch/-haut, Rohmilch und Hühnerzäkuminhalt.
Herstellung quantitativer Referenzstandards
Antibiotikaresistenztestung von Campylobacter spp.
Unterstützung bei der Aufklärung von Infektketten
molekularbiologische Feintypisierung (mittels MLST, flaA-/porA-Sequenzierung, cpn60, cgMLST und SNP-Analyse)
Molekularbiologie der Resistenz von Campylobacter spp.
Schnellnachweise mittels PCR und Real-time PCR
Stammsammlung
Beratung

Team / Aufgaben	Telefon	E-Mail
Dr. Kerstin Stingl Mikro- und Molekularbiologie (Leiterin)	-24206	kerstin.stingl@bfr.bund.de
Dr. Janine Heise Mikro- und Molekularbiologie (Stellv. Leiterin)	-24201	janine.heise@bfr.bund.de
Dr. Sarah Brüggemann-Schwarze Mikro- und Molekularbiologie (Wissenschaftl. Mitarbeiterin)	-24207	sarah.brueggemann-schwarze@bfr.bund.de
Christiane Buhler Speziesdifferenzierung, Mikrobiologie, Enzymtests (MTA)	-24214	christiane.buhler@bfr.bund.de
Marie-Theres Knüver Speziesdifferenzierung, Next Generation Sequencing, horizontaler Gentransfer (Dipl.-Biol.)	-24220	marie-theres.knuever@bfr.bund.de
Maja Thieck Speziesdifferenzierung, Antibiotikaresistenzen (BTA)	-24202	maja.thieck@bfr.bund.de
Sandra Preuß Speziesdifferenzierung, Next Generation Sequencing, horizontaler Gentransfer (Biotechnologin, B. SC.)	-24231	sandra.preuss@bfr.bund.de
Julia Golz Mikro- und Molekularbiologie (Postdoc)	-24218	julia.golz@bfr.bund.de
Imke Wulsten Mikro- und Molekularbiologie EsRAM Projekt (Doktorandin, M. Sc. Biologie)	-24210	imke.wulsten@bfr.bund.de
Juan Cruz Goenaga Speziesdifferenzierung, Mikro- und Molekularbiologie, Antibiotikaresistenzen (Lebensmitteltechnologe)	-24211	juan-cruz.goenaga@bfr.bund.de
Michael Zarske Mikro- und Molekularbiologie CHANCE-Projekt (Doktorand, M. Sc. Lebensmitteltechnologie)	-24229	michael.zarske@bfr.bund.de